Microscopie Confocale
La microscopie confocale permet d'accéder à l'imagerie tridimensionnelle des échantillons marqués en fluorescence ou à de l'imagerie en réflexion (biomatériaux), en ayant la possibilité de combiner ces deux approches.
La plateforme MICA met à votre disposition deux approches de la microscopie confocale. Si la flexibilité de la technologie à balayage laser répond à un large besoin d'imagerie multi-couleurs en biologie, l'approche "spinning disk" (à disque tournant) vous permettra d'observer des phénomènes rapides en limitant la photo-toxicité sur vos échantillons vivants.
Microscopes confocaux à balayage laser
Systèmes faciles à prendre en main :
-
Leica TCS SPE Microscope (2007)
-
Olympus FV10i (2010)
Systèmes plus flexibles :
- Nikon A1R (2015) : scanner résonant, module d'automatisation des acquisitions, maintien de focus, mosaïques
- Zeiss LSM5 Exciter (2009)
Systèmes avec modules spectraux :
-
Caractérisation ou détection des signatures des fluorophores sur les échantillons.
-
Optimisation de l'imagerie multi-couleur (>4 couleurs) en utilisant les signatures individuelles des molécules et la décomposition spectrale du mélange des marquages.
-
Mesures ioniques (pH...) par imagerie ratiométrique (sondes ioniques avec déplacement de leur spectre d'émission: SNARF).
Equipements disponibles :
- Zeiss LSM710 (2012)
- Zeiss LSM780 (2011) , (2012) : détecteur spectral sensible
- Leica TCS SP5 (2007)
: scanner résonant, détecteur sensible , (2006) : détecteur sensible - Leica TCS SP8 (2015) : détecteur sensible
Systèmes avec modules d'amélioration de la résolution :
- Zeiss LSM880 équipé d'un détecteur Fast AiryScan (2018) (2017)
Microscopes confocaux à disque tournant
- Olympus/Andor (2010) : 2 caméras : imagerie 2 couleurs simultanée, 3D rapide (surplatine piezo)
- Perkin Elmer UltraviewVox (2010) : photomanipulation, système de perfusion piloté, 3D rapide (surplatine piezo)
- Nikon TiE/Yokogawa W1 (2016) : module de photomanipulation